Michigan State University CLS/MT Program

El Program de Tecnología Médica de la Universidad Estatal de Michigan (Michigan State University) anuncia que la inscripción para el "III Curso Internacional de Micología Molecular" está abierta.

El curso está dirigido a todos los micólogos Latino Americanos interesados en las técnicas moleculares para desarrollar actividades de investigación o aplicadas al diagnóstico usando sondas del DNA. Previo conocimiento de la teoría o técnicas moleculares son ideales pero no requisitos. El curso es básico por lo tanto, se dará preferencia a aquellos con poco a nada de experiencia en las técnicas moleculares .

Sede:
Michigan State University, East Lansing, Michigan, USA

Fecha:
Julio 01 - Julio 12, 2002

El curso será mas práctico que teórico y cubrirá en espanol en once sesiones de laboratorio los siguíentes tópicos:

1) aislamiento del DNA y RNA en hongos filamentosos y levaduriformes; 2) análisis con enzymes de restricción (REA); 3) amplificación in vitro del DNA usando PCR; 4) caracterización y clonaje del DNA amplificado por PCR; 5) manipulación del DNA clonado: a) sequencia del DNA b) Southern blots.

Para mas detalles del curso escribir al director del curso:

Leonel Mendoza, M.Sc., Ph.D.
Assistant Professor,
Medical Technology Program,
Department of Microbiology and Molecular Genetics
Michigan State University,
322 N. Kedzie Lab.,
East Lansing, MI 48824-1031 Tel (517)353-7800; Fax (517)432-2006
mendoza9@msu.edu

III Curso de Micologia Molecular
Michigan State University
Junio 01 - 12, 2002
Contenido

1) Teoría: Introducción a las técnicas de aislamiento del DNA y ARN de hongos filamentosos y levaduriformes
Laboratorio No 1.
a) Métodos para la extracción del DNA: Rompimiento de la pared y extracción con la técnica phenol-cloroformo. Otras metodologías de extracción.
b) Characterización del DNA en agarosa gel electrophoresis
Laboratorio No 2.
a) Metodos de extración para obtener RNA total.
b) Characterización en gel electrophoresis

2) Teoría: Aplicación de las técnicas de restricción enzymática
Ejercicio No 3.
a) Análisis con enzymes de restricción
b) Characterización de las bandas de restricción en gel electrophoresis

3) Teoría: Introducción a las técnicas de PCR
Laboratorio No 4
a) Diseno de los iniciadores (primers) para la amplificación del DNA usando la metodología del PCR.
b) Metodología para la amplificación del DNA por PCR.
c) Evaluación de los amplicons obtenidos por PCR en gel electrophoresis

4) Teoría: Principios básicos de las técnicas de clonaje del DNA
Laboratorio No 5
a) Introducción de fragmentos del DNA en vectores (plásmidos)
b) Transfection de E. coli con plásmidos conteniendo los fragmentos en estudio
c) Detección de los posibles clones positivos.
d) Visualización del los clones positivos por la técnicas de "Cracking gel"
e) Aislamiento, caracterización y manipulación del DNA clonado.

5) Teoría: Principios de los analisis usando Southern blot
Laboratorio No 6
a) Separacion del DNA en estudio por gel electrophoresis
b) Transferencia del DNA en estudio a membranas.
c) Uso de sondas del DNA radioactivas (Probes) para la deteccion especifica del DNA en estudio (32P)
d) Lectura del los resultados usando film de rayos X.

6) Teoría: Sequencia del DNA
Laboratorio No 7
a) Sequencia del DNA clonado en el ejercicio No 5
b) Sequencia del DNA usando técnicas automatizadas.

Participantes al II curso en Michigan State University, Junio 01 Junio 15 2001

Argentina: Alicia Arechavala, Gabriela M. Santiso, Mario H. Bianchi, Norma Rodriguez de Kopp;

Brasil: Andrea F. Fernadez Belone, Susana Madeira, Patricia Sammarco Rosa;

El Salvador: Dominga Ayala de Chavarria;

Mexico: Ruben Lopez Martinez, Gerardo Mata;

Venezuela: Rosa Cristina Perez, Betriz Maldonado.

De derecha a izquierda: Gerardo Mata, John Perpich, Norma Rodriguez de Kopp, Ruben Lopez Martinez, Leonel Mendoza, Rosa Cristina Perez, Beatriz

Maldonado, Gabriela Santiso, Andrea Fernandez Belone, Mario Bianchi,, Alicia Arechavala, Suzana Madeira, Dominga Ayala de Chavarria, Patricia Sammarco Rosa.